2.实验室诊断
(1)病毒的分离与鉴定无PCV污染的PKl5细胞最常用于PCV2的分离。可取死亡猪的肺脏、淋巴结、肾脏、血清等作为病原的分离材料。由于PCV2在细胞培养中不产生细胞病变，因此，病料盲传1～3代后应进行PCV2抗原或核酸的检测加以鉴定。
(2)病毒的检测可采用PCR、原位核酸杂交、间接免疫荧光试验、间接免疫过氧化物酶试验等直接检测病料中的PCV2核酸或抗原。
(3)抗体检测可采用酶联免疫吸附试验(ELISA)、免疫荧光抗体技术、免疫过氧化物酶单层试验等，检测猪血清中的PCV2抗体。但由于PCV1和PCV2之间存在抗原交叉反应，因此已有的方法不能完全区分PCV1和PCV2感染。制备PCV2特异性的单克隆抗体，或者特异性的重组抗原能够满足建立特异性血清学方法的需要。国内已建立了利用基因工程表达的PCV2重组蛋白作为抗原的ELISA抗体检测方法。
需要注意的是目前在临诊上多种病原的合并感染十分普遍，因此在检测PCV2的同时，应同时检测其他病原体(如猪呼吸与繁殖综合征病毒、猪伪狂犬病毒、猪细小病毒、副猪嗜血杆菌等)。
防治措施
迄今为止还没有控制和消灭猪断奶后多系统衰竭综合征及PCV2感染所致其他疾病的有效措施，也没有切实有效的商品化疫苗和药物用来防御PCV2感染。而且PCV2对常规消毒剂抵抗力很强，给猪场的净化工作带来了困难。目前，控制猪断奶后多系统衰竭综合征应采取综合性的控制措施。
(1)改变和完善饲养方式，做到养猪生产各阶段的全进全出，避免将不同日龄的猪混群饲养，从而减少和降低猪群之间PCV2的接触感染机会。
(2)建立猪场完善的生物安全体系，将消毒卫生工作贯穿于养猪生产的各个环节。最大限度地降低猪场内污染的病原微生物，减少或杜绝猪群继发感染的几率。由于PCV2对一般的消毒剂抵抗力强，因此，在消毒剂的选择上应考虑使用广谱的消毒药。
(3)加强猪群的饲养管理，降低猪群的应激因素。很多应激因素都可诱发、促进猪断奶后多系统衰竭综合征的发生和加重发病猪群的病情，导致死亡率上升，因此，应尽可能地减少猪群的应激因素，避免饲喂发霉变质或含有真菌毒素的饲料，做好猪舍的通风换气，改善猪舍的空气质量，降低氨气浓度。保持猪舍干燥，降低猪群的饲养密度。
(4)提高猪群的营养水平。由于PCV2感染可以导致猪群的免疫功能下降，因此，营养是影响猪断奶后多系统衰竭综合征的一个重要因素。通过提高猪群的蛋白质、氨基酸、维生素和微量元素等水平，提高饲料的质量，提高断奶猪的采食量，给仔猪饲喂湿料或粥料，保证仔猪充足的饮水，可以在一定程度上降低猪断奶后多系统衰竭综合征的发生率和造成的损失。
(5)采用完善的药物预防方案，控制猪群的细菌性继发感染。没有有效的药物可以用于猪断奶后多系统衰竭综合征的治疗，即使一些继发的细菌性疾病，治疗效果也不好，因此，应提前采用药物预防来控制细菌性继发感染。针对目前我国猪群中猪断奶后多系统衰竭综合征的发病特点和在实际生产中的应用效果，建议以下药物用于预防方案。
①仔猪用药：哺乳仔猪在3、7、21日龄注射长效土霉素(200mg/mL)，每次0.5mL，或者在1、7日龄和断奶时各注射头胞噻呋(500mg/mL)0.2mL;断奶前1周至断奶后1个月，用泰妙菌素(50g/t)+金霉素或土霉素或强力霉素(150g/t)+阿莫西林(500g)拌料饲喂，或者添加2%氟苯尼考(1000～1500g/t)+泰乐菌素(200～250g/t)。继发感染严重的猪场，可在28、35、42日龄各注射头胞噻呋(500mg/mL)0.2mL。
②母猪用药：母猪在产前1周和产后1周，饲料中添加支原净(100g/t)+金霉素或土霉素(300g/t)。
(6)做好猪场猪瘟、伪狂犬病、猪细小病毒感染、气喘病等疫苗的免疫接种。规模化猪场应提倡使用猪气喘病灭活疫苗免疫接种，有利于提高猪群呼吸道和肺脏的免疫力，可减少呼吸道病原体的继发感染。
